豚精顕微鏡検査

応用目的：採集した雄豚の精液に対して顕微鏡検査を行うことにより、精液の鏡状況を有効に判断することができ、受精の成功率及び雄豚の生殖能力を推定する

応用方法：採精後直ちに精液を検査し、毎回精子に形態検査を行う必要はないが、新雄豚の最初の数回の射精に対して形態検査を行うべきである。以降は月に1回形態を検出する。

　1.精液の容量

通常、雄豚1頭の射精量は150〜250ミリリットルであるが、範囲は50〜500ミリリットルであることができる。一般に電子秤で精液の重量を量ることを提案し、豚の精液の比重は1.03で1に近いため、1グラムの精液の体積は約1ミリリットルに等しい。

ビーカーを食品袋に入れて電子秤にかけてゼロにする

食品袋を取り出した後、精液を入れた袋に入れ、読数すなわち精のグラム数を表示する

2.におい

正常で純粋な精液は少し生臭いにおいしかしない。におい異常の精液には、（1）精液は臭いが強く、精液は包皮液に汚染される可能性がある、（2）精液に臭いがある場合、膿が混じる可能性がある。におい異常の精液は廃棄しなければならない。

3.色つや

豚の精液は薄い灰白色から濃い乳白色を呈し、雄豚が射出したばかりの濃い精液はクリーム色（やや黄色寄り）を呈している。異常精液にはヘマトクリット（赤色）、膿精（緑色）があり、いずれも廃棄すべきである。

4.活力

活力は精液中の前進運動の精子が総精子数に占める割合である。

精子の活力を評価するには、通常は推定しかできないので、一定の経験が必要ですぎじゅつ人員が評定する。顕微鏡ステージは活力検査前に37〜39℃に予熱し、スライド、カバーガラスを一緒に予熱しなければならない。サンプラーを用いて10または15 ulの精液を採取し（サンプラーのノズルは使い捨てであることに注意し、消毒ティッシュペーパーできれいに拭き、再びサンプリングして、精液を汚染しないようにする）、予熱後のスライドガラスの中間に注注する。カバーガラスをかぶせる。カバーガラス方法＃ホウホウ＃はい、まずカバーガラスを精液滴の左側に置いてスライドガラスと角度を形成し、鋭角を呈し、カバーガラスを右に移動し、カバーガラスが精液と接触したときに、カバーガラスを置くことで、気泡の発生を回避し、検査結果に影響を与えることができます。カバーガラスをかぶせると顕微鏡視野に薄い層の精子を見ることができ、視野がはっきりしており、異なる層の精子の活力の違いによる判断に人為的な誤差が出ないようにすることができる。

100倍または400倍の顕微鏡を用いて精子の活力を検出する、すなわち視野における前進運動精子の占める割合を判断する。

活力レベル5の評価方法は、

視野全体に明らかに大きな運動波が5分もある

いくつかの運動波と精子の群れが現れて4分良い運動をします

群集運動が現れた方が良い3点

無群運動、部分的に前進運動を呈する一般的な2点

クリープ差1分のみ

無精子活動0点

注：運動波とは精子が群れをなして運動するとき、液体の運動形成を推進する雲霧状のタンブル現象を指す。

予温後のスライドガラス上に液滴を採取する

カバーガラスを被せた後、精液運動状況を観察精子運動が活発で運動波を形成することができる

100 x目視観測効果図400 x目視観測効果図

希釈保存された精液について、精子活力評価を行う際には、一般的に10級制で採点する。すなわち、希釈後の精液、精子の動きが見やすく、前進運動精子と非前進運動精子のおおよその割合に基づいて推定できるため、視野における前進運動精子の百分率を推定する。例えば、精子の70%が前進運動をしている場合、活力は0.7で、このように類推される。

元精液であれ希釈保存された精液であれ、検査中に精子の活力が悪い場合は、各段階を注意深く検査し、2回目の検査を行う必要があり、吸引ノズル、スライドガラス、カバーガラスは清潔でなければならず、精子に毒がなく、スライド温度は適切であることに注意しなければならない。2回目の検査がまだ悪い場合は、精液は廃棄しなければなりません。

マイクロドメイン会社は長年にわたってユーザーの使用過程に対する理解を経て、豚精は数量が多く、個体が大きく、標本の作成が簡単であるなどの特徴があるため、豚精の検査は顕微鏡に対する要求が高くなく、一般的には100 xと400 xを選んで観測すれば十分で、予算と要求に基づいて単目を選ぶことができる（WSB 100単眼生物顕微鏡）、両目（WSB 300両目生体顕微鏡)、デジタル顕微鏡（WSB 300 T+イメージングシステム）。